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摘要

電穿孔技術對哺乳動物細胞基因轉染效率的優化效果。通過調節電壓、脈沖時間等參數，結合威尼德電穿孔儀，成功實現了HEK293和CHO細胞的高效轉染。實驗表明，優化后的電穿孔條件可顯著提升外源基因表達水平，同時維持細胞存活率。研究結果為電穿孔技術在基因功能分析和重組蛋白生產中的應用提供了可靠依據。

引言

基因轉染技術是哺乳動物細胞基因功能研究和生物醫藥開發的核心手段之一。傳統化學轉染法（如脂質體法）雖操作簡便，但在難轉染細胞系中效率較低，且易受細胞類型限制。病毒載體轉染效率高，但存在生物安全風險及成本高昂的問題。電穿孔技術通過瞬時電脈沖誘導細胞膜通透性改變，為基因遞送提供了非化學、非病毒的替代方案。然而，其效率受脈沖參數、細胞狀態及質粒純度等多因素影響，需針對性優化。

本研究以HEK293和CHO細胞為模型，利用威尼德電穿孔儀系統探索不同電穿孔參數對轉染效率和細胞存活率的調控規律，旨在建立適用于哺乳動物細胞的高效、低損傷電穿孔轉染體系，為基因治療、重組蛋白生產等領域提供技術支持。

實驗部分

1. 材料與儀器

細胞系：HEK293（人胚腎細胞）、CHO（中國倉鼠卵巢細胞），均于含10%胎牛血清的DMEM培養基中培養。

質粒：攜帶增強型綠色熒光蛋白（EGFP）基因的pEGFP-N1質粒，純度（A260/A280）為1.8-2.0。

主要儀器：威尼德電穿孔儀（參數范圍：電壓50-500 V，電容100-2500 μF）、威尼德紫外交聯儀（用于后續核酸交聯驗證）、熒光顯微鏡、流式細胞儀。

試劑：某試劑細胞凋亡檢測試劑盒、某試劑DNA純化試劑盒。

2. 實驗方法

2.1 細胞預處理

將HEK293和CHO細胞接種于6孔板，密度為5×10^5 cells/mL，培養24小時至對數生長期。

轉染前用PBS洗滌兩次，加入0.25%胰酶消化并重懸于電穿孔緩沖液（pH 7.4，含10 mM磷酸鹽、250 mM蔗糖）。

2.2 電穿孔參數優化

電壓梯度測試：固定電容為1000 μF，脈沖時間5 ms，測試電壓范圍（150 V、200 V、250 V）。

脈沖時間測試：固定電壓200 V，調整脈沖時間（3 ms、5 ms、8 ms）。

每組實驗重復3次，質粒用量為2 μg/10^6 cells。

2.3 轉染效率與細胞存活率檢測

轉染后細胞接種于含培養基的12孔板，37℃、5% CO?培養48小時。

熒光顯微鏡觀察：統計表達EGFP的細胞比例。

流式細胞術：使用488 nm激光檢測EGFP陽性細胞占比。

細胞存活率：采用某試劑細胞凋亡檢測試劑盒，通過Annexin V-FITC/PI雙染法分析。

2.4 外源基因表達驗證

收集轉染后細胞，提取總RNA并反轉錄為cDNA，利用qPCR定量EGFP mRNA表達量（引物序列：F:5′-GACGACGGCAACTACAAGA-3′，R:5′-CTTGTACAGCTCGTCCATGC-3′）。

蛋白質水平檢測：Western blot分析EGFP蛋白表達，一抗為某試劑抗GFP單克隆抗體。

3. 數據分析

實驗數據以均值±標準差表示，采用GraphPad Prism 8.0進行單因素方差分析（ANOVA），P<0.05視為差異顯著。

結果

1. 電穿孔參數對轉染效率的影響

電壓優化：HEK293細胞在200 V時轉染效率高（62.3±3.1%），CHO細胞在250 V時達峰值（48.7±2.9%）。電壓過高（>300 V）導致細胞存活率下降至<50%。

脈沖時間：5 ms脈沖下兩種細胞轉染效率均優于其他組（HEK293: 65.1±2.8%；CHO: 51.4±3.2%）。

2. 細胞存活率與轉染效率的平衡

HEK293在200 V/5 ms條件下存活率為82.4±4.1%，CHO在250 V/5 ms下存活率為68.9±3.7%。

流式細胞術顯示，EGFP陽性細胞群熒光強度較對照組提升10倍以上。

3. 外源基因表達驗證

qPCR結果表明，轉染后EGFP mRNA表達量較對照組增加25-30倍（P<0.001）。

Western blot在約27 kDa處可見清晰EGFP條帶，與預期分子量一致。

討論

本研究證實，威尼德電穿孔儀可通過參數優化顯著提升哺乳動物細胞轉染效率。HEK293因細胞膜較薄，對低電壓響應更佳，而CHO細胞需較高電壓以克服膜屏障，此差異可能與細胞系固有特性相關。此外，脈沖時間延長可增加質粒跨膜幾率，但超過8 ms可能引發不可逆膜損傷。實驗建立的優化條件在維持細胞活性的同時，實現了外源基因的高效表達，為后續大規模蛋白生產或基因編輯提供了可行方案。

結論

電穿孔技術通過精準參數調控，可高效介導哺乳動物細胞基因轉染。本研究利用威尼德電穿孔儀，明確了HEK293與CHO細胞的最佳轉染條件，為基因功能研究與生物制藥開發提供了技術參考。未來將進一步探索電穿孔與其他遞送技術（如納米載體）的協同效應，以拓展其在難轉染原代細胞中的應用潛力。

參考文獻

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