熒光定量PCR實驗檢測

一、實驗原理

實時熒光定量PCR （Quantitative Real-time PCR）是一種在DNA擴增反應中，以熒光化學物質測每次聚合酶鏈式反應（PCR）循環后產物總量的方法。通過內參或者外參法對待測樣品中的特定DNA序列進行定量分析的方法。Real-timePCR是在PCR擴增過程中，通過熒光信號，對PCR進程進行實時檢測。由于在PCR擴增的指數時期，模板的Ct值和該模板的起始拷貝數存在線性關系，所以成為定量的依據。

二、實驗操作步驟：

1. 細胞培養及細胞傳代

1. 倒置顯微鏡觀察細胞，評估細胞匯合的程度以及確認無細菌和真菌污染；
2. 移去培養皿（瓶）中的培養液；
3. 加入相當于培養液體積一半的PBS清洗單層細胞，一般三次即可；
4. 按1ml/25cm2表面積的量加入0.25%胰酶消化單層細胞。搖晃培養皿（瓶）使其胰蛋白酶覆蓋細胞單層，倒出多余的胰蛋白酶；
5. 將培養瓶放回培養箱，放置2-10 min；
6. 用倒置顯微鏡觀察細胞以確保所有細胞都分離且漂浮，輕拍培養皿（瓶）的一側來釋放殘留的貼壁細胞；
7. 用少量的含新鮮血清的培養液重懸細胞以滅活胰蛋白酶，取出100-200μl用于計數；
8. 將所需數量的細胞移至一個新標記好的溫育過培養液的培養皿（瓶）中；選擇適當培養條件培養細胞系；
9. 按照細胞系的生長特性重復該步驟，直到胞狀態良好、無污染，可以鋪板使用，其余選擇凍存。

2.活細胞計數

1. 取一瓶傳代的細胞，待長成單層以后使用；細胞懸液的制備方法：用0.25%的胰酶消化、PBS洗滌后，加入培養液吹打制成待測細胞懸液。
2. 蓋好蓋玻片，取一套血球計數槽，制備計數用的細胞懸液：用吸管吸適量細胞懸液到離心管中，加入等體積臺盼藍染液，加入染液后就可以在顯微鏡下區別活細胞和死細胞。若僅是單純的進行細胞計數，不考慮細胞的活力，則可不使用臺盼藍染色。
3. 將細胞懸液滴入計數板，注意蓋玻片下不要有氣泡，也不要懸液流入旁邊槽中。
4. 統計四個大格的細胞數，將血球計數板放于顯微鏡的低倍鏡下觀察，并移動計數板，當看到鏡中出現計數方格后，數出四角的大格（每格含有16個中格）中沒有被染液染上色的細胞數目。
5. 計算原細胞懸液的細胞數。按照下面公式計算細胞密度：

6）（細胞懸液的細胞數）/ml = (四個大格子細胞數/4）×2×10⁴

3.細胞處理

4.RNA提取

1）細胞中加入1ml Trizol，將細胞裂解吸到一個1.5ml的EP管中；

2）加入200ul氯.仿，輕輕顛倒數次混勻，室溫放置5分鐘；

3）12000rpm，4℃15min 4℃；

4）轉上層水相（約400ul）于新1.5ml EP管中，加入400ul異丙醇，混勻，室溫靜置10min；；

5）12000rpm 10min 4℃；

6）棄上清，沉淀用預冷的70%無水乙醇洗3次，空氣干燥5-10分鐘，溶于20ulDEPC水中；

7）分光光度計測定RNA濃度。

5.RNA cDNA第.一鏈合成

1. 將逆轉所需要的物品準備好，RNA濃度計算好，tube準備并標記上；
2. 在冰浴的nuclease-free PCR管中加入試劑
3. 輕輕混勻，42度孵育15分鐘。
4. 85度加熱5秒失活TransScript RT/RI和gDNA Remover。
5. 將上述溶液-20°C保存。

6.熒光定量PCR檢測

1. 將cDNA樣品稀釋10倍作為模板上機檢測。
2. 配制反應混合液
3. PCR循環條件
4. 儀器的操作

完成上述步驟后，把加好樣品的96孔板放在ABI Stepone plus型熒光定量PCR儀中進行反應。