昆蟲細胞無血清懸浮生長培養基--這種產品是無血清的、完-全懸浮的細胞培養基,適用于各種細胞系,支持高密度細胞生長。它具有兩倍的時間、高活力和與廣泛的細胞類型兼容的特點。當與Bac到Bac昆蟲細胞表達系統結合使用時,它可以在HiFive和SF9昆蟲細胞中高效和穩定地表達多種蛋白質。與Bac和SF9細菌桿狀病毒表達系統結合,可以有效和穩定地在HiFivea和SF9害蟲細胞中表達多種蛋白質。
艾美捷昆蟲細胞無血清懸浮生長培養基基本參數:
貨號:A-EXO005
規格:500mL, 1000mL
保存條件: 4℃避光保存;保質期 12 個月。
昆蟲細胞無血清懸浮生長培養基使用方法:
昆蟲懸浮細胞培養環境
細胞培養條件:溫度曲線:27℃±0.5℃、濕度曲線:70%±20%、無需 CO2、120rpm(振幅:25)。培養過
程中需注意以下三點:
1) 保證搖床 24 小時正常運轉;
2) 防止外界環境溫度過高,導致培養箱內溫度失控;
3) 防止培養箱內水盤缺水,導致培養箱內濕度過低。
培養基適應
1. 直接適應:最初培養階段,Hi Five 細胞按初始密度 0.5×10
6 cells/mL 接種,SF9 細胞按初始密度 1.0×10
6
cells/mL 接種,直接將培養基更換為昆蟲細胞無血清懸浮生長培養基 (A-EXO005) 進行培養。待細胞培養 2-3
代,且生長穩定后進行后續實驗。Hi Five 細胞穩定生長時按 0.5×106cells/mL 密度接種,SF9 細胞穩定生長時按 1.0×106cells/mL 密度接種,培養 72h 后均可達到 5-7×106 cells/mL,細胞活率≥90%。
2. 間接適應:A-EXO005 培養基與細胞原培養基 1:1 混合培養細胞,連續傳 2-3 代,細胞穩定生長后可將培
養基更換為 A-EXO005 培養基,再傳 2-3 代,細胞生長穩定后進行后續實驗。Hi Five 細胞穩定生長時按 0.5×106 cells/mL 密度接種,SF9 細胞穩定生長時按 1.0×106cells/mL 密度接種,培養 72h 后均可達到 5-7×106cells/mL,細胞活率≥90%。
3. 注意事項:
3.1. 根據細胞具體情況選擇進行培養基直接適應或者間接適應。
3.2 細胞馴化初期,若出現密度低、結團等不穩定狀態,根據密度選擇合適的傳代方式。
a. 稀釋傳代:根據細胞密度計算傳代時所需細胞懸液,去除多余細胞懸液并補加新鮮培養基。
b. 離心傳代:根據細胞密度計算傳代時所需細胞懸液,800rpm(114g)離心 5min,去除上清,用新鮮
培養基重懸細胞。
4. 細胞正常狀態傳代:
昆蟲懸浮細胞復蘇:
1. 預熱培養基:取 20mL 的對應培養基置于 27℃預熱,保證預熱充分。
2. 將凍存管從液氮罐或-80℃冰箱中取出,迅速轉移至 37℃水浴中,快速搖晃,直至完-全融化。
3. 取預熱好的培養基 5mL 于無菌離心管中,并將解凍后的細胞懸液移入此離心管中。800rpm 離心 5min(除去凍存液中 DMSO)。
4. 離心后棄去上清,用 15mL 預熱好的培養基(保證較高細胞密度)重懸細胞,移至相應搖瓶,放于培養箱中
懸浮培養。
昆蟲懸浮細胞傳代:
1. Hi Five 細胞復蘇初期傳代:
細胞復蘇后前兩代,如果細胞密度>2×106 cells/mL,取部分細胞懸液離心傳代,按初始密度 0.8×106 cells/mL
接種;如果細胞密度≤2×106 cells/mL,進行全部離心換液(細胞剛復蘇會有細胞碎片,屬正常現象)。
2. SF9 細胞復蘇初期傳代:
復蘇后 2-3 天取樣計數,若細胞密度<2×106cells/mL 以下,細胞不做任何處理,繼續培養 2-3 天(復蘇后 4-6天),取樣計數,若細胞密度 2-5×106cells/mL,直接向搖瓶中加入新鮮培養基將細胞密度調整至 1×106cells/mL左右,切忌不要離心傳代,繼續培養,若細胞密度>5×106cells/mL,可正常稀釋傳代。
3. Hi Five 活細胞初期傳代:
收到細胞后,將細胞轉移至搖瓶中,取樣計數并查看細胞狀態,如果細胞密度>2×106 cells/mL,可以稀釋傳代,按 0.8×106 cells/mL 接種;如果細胞密度≤2×106 cells/mL,建議全部離心傳代。(細胞經歷運輸過程會有細胞碎片,屬正常現象)。
4. SF9 活細胞初期傳代:
收到細胞后,將細胞轉移至搖瓶中,取樣計數并查看細胞狀態,如果細胞密度≥5×106 cells/mL,可以稀釋傳代,按 2×106 cells/mL 接種;如果細胞密度<5×106 cells/mL,繼續培養 1-4 天,此期間需每 24h 取樣計數查看細胞狀態,當細胞密度≥5×106 cells/mL,按 2×106 cells/mL 接種,稀釋傳代,直至細胞恢復正常狀態后,按1×106 cells/mL 接種。(細胞經歷運輸過程會有細胞碎片,屬正常現象)。
昆蟲懸浮細胞凍存:
1. 待細胞恢復至正常狀態后,擴大細胞培養體積準備凍存建庫。盡量多建細胞庫,保證備份充足。
2. 含血清凍存:選擇處于對數生長期、活率>90%細胞進行凍存,凍存細胞密度:15-20×106 cells/mL,推薦20×106 cells/mL。
無血清凍存:選擇處于對數生長期、活率>90%細胞進行凍存,凍存細胞密度:30-40×106 cells/mL,推薦40×106 cells/mL。
3. 準備凍存盒:向程序降溫盒注入適量異丙醇,置于 4℃冰箱預冷。
4. 含血清細胞凍存液配制:凍存液=40%新鮮培養基+50%FBS(建議使用進口胎牛血清)+10%DMSO,凍存液配好后置于 4℃冰箱預冷。
無血清細胞凍存液配制:凍存液=45%新鮮培養基+45%細胞培養上清+10%DMSO,凍存液配好后置于 4℃冰箱預冷。
凍存液配制時,先加培養基再加血清或 DMSO,防止 DMSO 濃度過高導致血清有效成分變性。
5. 取細胞懸液,800rpm 離心 5min,棄去上清,用適量細胞凍存液重懸細胞,調整細胞密度至目標值。
6. 快速分裝細胞液至凍存管中。
7. 將凍存管放入程序降溫盒中,放于-80℃冰箱,24h 后轉至液氮罐中儲存。一段時間后復蘇檢測。
該試劑僅用于科學研究領域,不適用于臨床診斷或其他用途。
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