血液中血清蛋白及其他球蛋白的分離方法
一、實驗原理
帶電質點在電場作用下，帶正電荷的移向負極，帶負電荷的移向正極，這種現象稱為電泳。蛋白質分子具有許多可解離的酸性基團和堿性基團，在一定的pH條件下，它會解離而帶電，在某一pH下，蛋白質分子中所帶的正電荷數恰好等于負電荷數，即分子靜電荷等于零。此時蛋白質分子在電場中不移動，溶液的這一PH值稱為該蛋白質的等電點。
當溶液的pH小于該蛋白質的等電點，則蛋白質分子會結合一部分H離子而帶正電荷，在電場中就會向負極移，反之，如果溶液的pH大于該蛋白質的等電點，則蛋白質分子會解離出一部分H離子而帶負電荷，在電場中就會向正極移動。
由于各蛋白質的等電點不同，在相同的pH溶液中所帶的電荷性質不同，電荷的數目不同，因而在電場中泳動的方向和速度也不相同，從而使混合樣品中的蛋白質各組分得到分離。
本實驗采用的醋酸纖維薄膜電泳是以醋酸纖維薄膜為支持物。醋酸纖維薄膜對蛋白質樣品吸附極少而無“拖尾”現象。
本方法快速省時、靈敏度高、樣品用量少、操作簡單，目前已廣泛用于分析檢測血漿蛋白、脂蛋白、糖蛋白、胎兒甲種球蛋白、體液、脊髓液、脫氫酶、多肽、核酸及其他生物大分子，為心血管病，肝硬化及某些癌癥鑒別診斷提供了可靠的依據，因而已成為醫學和臨床檢驗的常規技術。
二、實驗用品
（一）器材
（1）電泳儀和臥式電泳槽。
（2）分光光度計。
（3）醋酸纖維薄膜。
（4）培養皿和點樣玻璃片。
（二）試劑
（1）Barbitalum：Barbiturate sodium緩沖液
（2）染色液：稱取0.5g氯基黑10B，加入蒸餾水40ml,甲醇50ml和冰醋酸10ml混勻，在具塞試劑瓶內貯存。
（3）透明液：冰醋酸25ml,加 95%乙醇75ml。
（4）漂洗液：乙醇45ml，冰醋酸5ml，蒸餾水50ml。
（6）定量洗脫液：0.4mol/L NaOH溶液。
（三）材料
新鮮血清（無溶血現象）。
三、實驗程序
（一）操作方法
1.儀器和薄膜的準備
（1）酸酸纖維薄膜的剪裁和準備：醋酸纖維膜分成有光澤和元光澤面兩面，選擇無光澤一面，距離邊沿1.5cm處劃一條直線，然后把薄膜剪成2×8cm,將裁好的薄膜無光澤面朝下，漂浮巴比妥緩沖液上，若漂浮的薄膜在15~30S內迅速潤濕，整條薄膜色澤深淺一致，可以用于電泳。讓膜自然下沉，待膜*浸透約0.5h后取出，夾在清潔的濾紙中間輕輕吸去多余的緩沖液，同時分辨光澤面和無光澤面。
（2）制作濾紙橋：剪裁尺寸合適的濾紙條，取雙層附著在電泳槽的支架上。使它的一端與支架前沿對齊，另一端浸入電極槽的緩沖液內，然后用緩沖液將濾紙全部潤濕并驅除氣泡，使濾紙緊貼在支架上，即為“濾紙橋”。按照同樣的方法，在另一個電極槽的支架制作相同的濾紙橋。它們作用是聯系醋酸纖維薄膜和兩極緩沖液之間的橋梁。
（3）平衡：用平衡裝置，使兩個電極槽內緩沖液的液面彼此處于水平狀態，一般需要平衡15~20min。
2.點樣
在薄膜無光澤的一面點樣。點樣在距負1.5cm處。點樣時，用玻璃片沾上血清，先在濾紙上練習點樣，使血清均勻分布在點樣區，形成具有一定寬度，粗細勻稱的直線，試點熟練之后，開始點在醋酸纖維薄膜上。
3. 電泳
用鑷子將目點樣端的薄膜平貼在電泳槽負極支架的濾紙橋上，另一端平貼于正極，薄膜要緊貼濾紙橋并繃直，中間不能下垂。
4. 染色
電泳完畢立即取出薄膜，直接浸入染色液中染色5min，取出后用漂洗液浸洗脫色，每隔10min左右換一次漂洗液，連續更換3次，可使背景顏色脫去，將膜夾于干凈的濾紙中，用電吹風的冷風將膜吹干。操作中，要注意控制染色和漂洗的時間，防止背景過深或某些區帶太淺。
5. 結果判斷
一般在染色后的薄膜上可顯現清楚的五條區帶。從正起，依次為清蛋白，a1球蛋白，，a2球蛋白，β球蛋白和r球蛋白。
6. 透明
取一條漂洗清楚的電泳薄膜，待干燥后浸入透明液中約5min,取出平貼于玻璃板上，使*干燥，即成透明膜，電泳圖譜仍清晰可見，可以長期保存。
7. 定量洗脫法
用洗脫法測定各蛋白質組分的相對百分含量。將電泳圖譜的各區帶剪下，分別浸于盛有0.4mol/L NaOH溶液的試管中，清蛋白管加入4ml氫氧化鈉溶液，其余每管加2ml氫氧化鈉溶液，揺勻，放入37℃恒溫水浴中浸提30min，每隔10min充分搖動一次，以便將色澤*洗脫下來。該溶液顏色較穩定，在室溫下24h內顏色強度無顯著變化，然后在620nm波長處比色，測定各管的光吸收值。分別計算血清各部分蛋白質所占百分率。
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