這些超濾離心管的使用問題你都遇到過嗎？

來源：濟南來寶醫療器械有限公司 2021年08月16日 16:13

近做實驗不順利，經常得不到目標蛋白，要么就是蛋白損失很大。怎么辦呢？

由于超濾管使用不恰當或是超濾知識缺乏引起的問題，簡直成了實驗汪們蛋白實驗不成功、效率低下的常見原因之一。比如說：

為什么我截留分子量選擇沒錯，蛋白有時候卻會漏出在濾出液中？

為什么我用濃縮后的蛋白做下游分析的時候發現有干擾？

用超濾管來分離兩種蛋白可以嗎？

有時候我用超濾離心管連水都離不下來，可能的原因是？

超濾管可以用來脫鹽和濃縮核酸嗎？

如何給超濾管滅菌？

于是，膜過濾和超濾專家專門寫了一篇攻略，幫助實驗小白們成功在通往技術大牛的道路上打怪升級。

廢話不多說，上干貨，小板凳搬好了哦！

我們先來看看重點問題怎么解決

為什么我截留分子量選擇沒錯，
蛋白有時候卻會漏出在濾出液中？

導致漏蛋白甚至檢測不到蛋白的原因很復雜，應優先根據樣品調整工藝，因為同一種膜、截留分子量和裝置組合對于不同的蛋白質類別甚至物種而言可能并非優之選。

在選擇過程中，應先執行以下步驟：

1	考慮樣品和分子特性：比如改變pH 可能增加構象改變的風險，而降低溫度可能降低濃縮效率等。
2	選擇正確的膜：超濾沒有太多的膜選項，但您應對再生纖維素（RC）、Hydrosart® 和聚醚砜（PES）材料進行測試，以確定哪種材料可為您的特定材料提供較低的非特異性結合和優的回收率。
3	選擇合適的截留分子量，通常是靶標1/3大小的截留分子量比較適合。但有時則需要更小的孔徑來滿足回收率的要求。如果在病毒和核酸樣品，可參看下面截留分子量和病毒顆粒分子大小以及核酸大小的換算表。
4	選擇合適的裝置：賽多利斯擁有適用于低濃度樣品、DNA、蛋白質、病毒、過濾應用等廣泛的裝置選項；選擇合適的裝置可以有效改善結果。
5	使用合適的裝置處理方法：例如預沖洗以去除分析物或用非干擾蛋白沖洗以鈍化結合位點并減少損失。
6	考慮樣品控制方法，例如使用裝置內的“死體積”移走所有截留物，或預灌裝濾液管以控制截留物的終體積。

為什么我用濃縮后的蛋白
做下游分析的時候發現有干擾？

超過濾薄膜含有微量甘油。如果此材料干擾分析，可用緩沖液或去離子水預清洗。如果干擾仍然存在，用 0.1 N NaOH 清洗，然后用緩沖液或去離子水再次清洗后甩干。如果必須用NaOH處理的時候，推薦試用聚醚砜（PES）膜，因為比（再生纖維素）RC膜更耐NaOH，同時提醒NaOH不能過夜浸泡。

用超濾管來分離兩種蛋白可以嗎？

因為超濾膜的孔徑不是規則的結構，所以不能進行精確的分離，所以按照經驗，我們推薦兩個蛋白的分子量要相差一個數量級（10倍）以上才可以進行分離。另外，賽多利斯的300k，1000k和0.2um的超濾管可以實現10倍以上分子量差異的蛋白粗分離。

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