α-半乳糖苷酶（α-Galactosidase, α-GAL）試劑盒說明書

分光光度法 50 管/24 樣

正式測定前務必取 2-3 個預期差異較大的樣本做預測定測定意義：

α-GAL (EC 3.2.1.22)廣泛存在于動物、植物、微生物和培養細胞中，能專一地催化α半乳糖苷鍵的水解，主要參與棉子糖、水蘇糖、蜜二糖和半乳甘露聚糖等半乳糖苷的降解。α-GAL 對于植物種子的萌發至關重要，種子萌發初期，其催化產生的 D-半乳糖通過糖酵解途徑迅速轉化和消耗，為種子的萌發提供最初的能量來源，后期則主要參與細胞壁儲藏多糖水解。

測定原理：

α-GAL 分解對-硝基苯-α-D-吡喃半乳糖苷生成對-硝基ben酚，后者在 400nm 有最大吸收峰，通過測定吸光值升高速率來計算α-GAL 活性。

α-半乳糖苷酶試劑盒  糖代謝系列-常備現貨

組成：

試劑一：粉劑×1 瓶，-20℃保存；臨用前每瓶加入 5ml 蒸餾水，充分溶解備用；用不完的試劑仍-20℃保存。

具體產品的參數以收到產品說明書的參數為準

自備儀器和用品：

可見分光光度計、臺式離心機、水浴鍋、可調式移液器、1ml 玻璃比色皿、研缽、冰和蒸餾水。

粗酶液提?。?/span>

1、細菌或培養細胞：先收集細菌或細胞到離心管內，離心后棄上清；按照細菌或細胞數量（10⁴ 個）：提取液體積（ml）為 500~1000：1 的比例（建議 500 萬細菌或細胞加入 1ml 提取液），超聲波破碎細菌或細胞（冰浴，功率 20％或 200W，超聲 3s，間隔 10s，重復 30 次）；15000g 4℃離心 10min，取上清，置冰上待測。

2、組織：按照組織質量（g）：提取液體積(ml)為 1：5~10 的比例（建議稱取約 0.1g 組織，加入 1ml 提取液），進行冰浴勻漿。15000g 4℃離心 10min，取上清，置冰上待測。

測定步驟：

1、分光光度計預熱 30min 以上，調節波長至 400nm，蒸餾水調零。

2、樣本測定（在 EP 管中依次加入下列試劑）：

迅速混勻，放入 37℃準確水浴 30min

充分混勻，400nm 處測定吸光值A，計算ΔA=A 測定-A 對照。每個測定管需設一個對照管。

α-GAL 活性計算：

標準條件下測定的回歸方程為y =0.00543x -0.0027；x 為標準品濃度（nmol/ml），y 為吸光值。

（1） 按樣本蛋白濃度計算：

單位的定義：每mg 組織蛋白每分鐘產生 1nmol 對-硝基ben酚定義為一個酶活力單位。

α-GAL 活力(nmol/min/mg prot)=[(ΔA+0.0027)÷0.00543×V 反總]÷(V 樣×Cpr)÷T

=61.39×(ΔA+0.0027) ÷Cpr

需要另外測定，建議使用本公司BCA 蛋白質含量測定試劑盒。

（2） 按樣本鮮重計算：

單位的定義：每g 組織每分鐘產生 1nmol 對-硝基ben酚定義為一個酶活力單位。

α-GAL 活力(nmol/min /g 鮮重)＝[(ΔA+0.0027)÷0.00543×V 反總]÷(W×V 樣÷V 樣總)÷T

=61.39×(ΔA+0.0027) ÷W

（3） 按細菌或細胞密度計算：

單位的定義：每 1 萬個細菌或細胞每分鐘產生 1nmol 對-硝基ben酚定義為一個酶活力單位。

α-GAL 活力(nmol/min /10⁴ cell)=[(ΔA+0.0027) ÷0.00543×V 反總]÷(500×V 樣÷V 樣總)÷T

=0.123×(ΔA +0.0027)

V 反總：反應體系總體積，0.5ml；V 樣：加入反應體系中樣本體積，0.05ml；V 樣總：加入提取液體積， 1ml；Cpr：樣本蛋白質濃度，mg/ml；W：樣本質量，g； 500：細胞或細菌總數，500 萬；T：反應時間， 30min。

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